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實驗載玻片的使用細節(jié)

更新時間:2025-07-14      點擊次數(shù):994
  載玻片是生物學(xué)、醫(yī)學(xué)及材料科學(xué)實驗中常用的工具之一,其使用規(guī)范直接影響樣本制備質(zhì)量、觀察效果及實驗結(jié)果的準(zhǔn)確性。以下從載玻片的選擇、清潔、樣本處理、封片技術(shù)、染色與固定、標(biāo)記與保存等環(huán)節(jié),系統(tǒng)闡述其使用細節(jié)及注意事項。
  一、載玻片的選擇與預(yù)處理
  1. 材質(zhì)與類型
  - 普通載玻片:用于常規(guī)組織、細胞或微生物觀察,厚度通常為1-1.2mm,需滿足透光性要求。
  - 磨砂邊載玻片:邊緣磨砂處理,便于書寫標(biāo)記,避免滑脫。
  - 帶凹槽載玻片:用于液體樣本(如血液、細菌懸液),可防止樣本流動。
  - 熒光專用載玻片:低熒光背景,適用于熒光顯微觀察。
  2. 清潔與滅菌
  - 新載玻片處理:出廠時可能殘留油脂或灰塵,需用70%乙醇擦拭,再以超純水沖洗,烘箱干燥(60℃, 30分鐘)。
  - 重復(fù)使用載玻片:先用洗衣粉水煮沸去除蛋白殘留,清水沖洗后浸泡于鉻酸洗液(需戴防護手套)過夜,取出后流水沖洗12小時,烘干備用。
  - 滅菌處理:高溫高壓滅菌(121℃, 20分鐘)或紫外線照射30分鐘,避免微生物污染。
  二、樣本加載與固定
  1. 樣本類型與加載方式
  - 液體樣本(如血液、細菌懸液):
  - 滴加少量樣本(直徑約5mm)于載玻片中央,避免過量導(dǎo)致溢出。
  - 血液樣本需推片制備血涂片:取一滴血置于一端,以另一載玻片邊緣快速推平,形成均勻薄層。
  - 固體樣本(如組織切片、菌落):
  - 用鑷子夾取樣本,輕放于載玻片中央,最小化機械損傷。
  - 培養(yǎng)細胞:
  - 棄去培養(yǎng)基,用PBS輕洗后,胰酶消化收集細胞,滴加懸浮液并自然沉降。
  2. 固定方法
  - 空氣干燥法:適用于血液、糞便樣本,室溫靜置至干燥。
  - 化學(xué)固定法:常用甲醇、乙醇或丙酮固定5-10分鐘,用于細胞形態(tài)固定。
  - 加熱固定法:火焰灼燒載玻片背面(需遠離樣本),快速通過以固定細菌涂片。
  三、封片技術(shù)與蓋玻片使用
  1. 封片劑選擇
  - 水溶性封片劑:甘油、PBS(用于活細胞觀察)。
  - 非水溶性封片劑:中性樹膠(如DPX)、指甲油(用于封片)。
  - 熒光封片劑:抗熒光淬滅劑(如ProLong Gold)。
  2. 蓋玻片操作規(guī)范
  - 傾斜接觸法:以45°角緩慢放下蓋玻片,避免產(chǎn)生氣泡。
  - 封片劑用量:液體樣本需覆蓋樣本且不超過蓋玻片1/3面積;過量會導(dǎo)致溢出或樣本漂移。
  - 排除氣泡:輕壓蓋玻片邊緣,用濾紙吸除多余液體,或用鑷子輕敲載玻片排出氣泡。
  四、染色與標(biāo)記
  1. 染色步驟
  - 單一染色法(如亞甲藍、結(jié)晶紫):滴加染液覆蓋樣本,染色30秒-2分鐘,水洗后吸干。
  - 復(fù)合染色法(如革蘭氏染色):需嚴(yán)格按順序操作(初染→媒染→脫色→復(fù)染),脫色時間控制精準(zhǔn)。
  - 免疫熒光染色:樣本需封閉(如BSA孵育),一抗、二抗依次孵育,避光操作。
  2. 標(biāo)記與記錄
  - 標(biāo)記位置:用記號筆在磨砂面標(biāo)注樣本名稱、濃度、日期,避免接觸樣本面。
  - 編號規(guī)則:采用“日期+樣本類型+編號”格式(如20231001-Blood-01)。
  五、保存與常見問題
  1. 保存條件
  - 短期保存:封片后置于干燥盒內(nèi),避光防潮。
  - 長期保存:用封口膜包裹載玻片,存放于切片盒中,4℃或-20℃保存。
  2. 常見問題與解決
  - 氣泡殘留:重新封片或用針頭挑破氣泡后補封片劑。
  - 樣本過厚:可能導(dǎo)致顯微鏡調(diào)焦困難,需重新制備更薄樣本。
  - 污染霉變:樣本發(fā)霉時用70%乙醇擦拭,重新固定封片。
  - 蓋玻片碎裂:操作時避免用力不均,選用合適厚度的蓋玻片(通常18μm)。
  六、特殊實驗注意事項
  1. 活細胞觀察:需使用恒溫載物臺(37℃),封片劑選擇生理鹽水或?qū)S门囵B(yǎng)基。
  2. 原位雜交(FISH):載玻片需經(jīng)多聚賴氨酸處理以增強樣本附著力。
  3. 電子顯微鏡樣本:需將樣本包埋于樹脂中,載玻片僅用于初步處理。
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